辣椒碱纳米乳注射剂的制备及其体外评价

来源:岁月联盟 作者: 时间:2015-05-10

  2.7    辣椒碱纳米乳含量测定

  2.7.1    色谱条件与系统适应性试验    色谱柱为Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相为甲醇水磷酸(体积比70∶30∶0.1);荧光检测波长为λex=283 nm,λem=310 nm;流速为1.  0 mL·min-1;进样量为20 μL。辣椒碱保留时间12.3 min,理论塔板数4 156,拖尾因子1.13,峰形对称,色谱图见图4A。

  2.7.2    样品溶液的制备    精密称取0.10 mg辣椒碱对照品,无水乙醇溶解并定容至10 mL,取该液1.  0 mL,无水乙醇稀释至10 mL,摇匀,制得1.0  μg/mL辣椒碱对照液。精密量取0.004%辣椒碱纳米乳0.  30 mL(约相当于辣椒碱12 μg),无水乙醇溶解并定容至10 mL,超声混匀,制得1.2 μg/mL辣椒碱供试液。精密量取不含辣椒碱的空白纳米乳0.30 mL,同法制得阴性对照液。

  2.7.3    方法专属性考察    分别量取对照液、供试液及阴性对照液20 μL,按上述色谱条件测定,结果表明,空白基质无干扰,且供试液与对照液保留时间基本一致,见图4。

  图4    3种样品溶液荧光HPLC图(略)

  Figure 4    FluorescenceHPLC of three samples

  2.7.4    标准曲线绘制    精密称取辣椒碱对照品0.  20 mg于10 mL容量瓶中,无水乙醇溶解并定容至刻度,摇匀,得20 μg/mL辣椒碱标准储备液。精密吸取该储备液0.1、0.3、0.4、0.5、1.0、2.0、3.0 mL置10 mL容量瓶中,无水乙醇稀释至刻度,摇匀,制得系列浓度对照液。分别进样20 μL,按上述色谱条件测定,以对照液质量浓度(ρ)为横坐标,峰面积(A)为纵坐标,计算回归方程为:A=4×106ρ-224614,r=0.999 7,结果表明辣椒碱在0.20~6.00 μg/mL范围内与峰面积线性关系良好。以信噪比(S/N)=3计算,测得辣椒碱最低检测限为0.1 ng。

  2.7.5    精密度试验    取 0.1 μg/mL辣椒碱对照液,连续进样5次,测得平均峰面积为10 012 711,RSD为0.54%,表明仪器精密度良好。

  2.7.6    重现性试验    按上述方法制备浓度为0.8、1.0、2.0、4.0、6.0 μg/mL的辣椒碱供试液,各3份,以1.  0  μg/mL辣椒碱对照液的峰面积定量,结果各浓度辣椒碱含量平均值为91.10%、94.94%、91.  03%、91.01%、90.04%;RSD(n=3)为0.37%、0.85%、0.25%、0.42%、1.7%,表明本方法重现性良好。

  2.7.7    稳定性试验    取供试液适量,分别于室温放置0、2、4、6、8、12、24 h后按色谱条件测定,测得峰面积日内RSD为0.32%(n=7),表明供试液在24 h内稳定。每天测1次,连续测5 d,峰面积日间RSD为1.5%(n=5)。

  2.7.8    回收率试验    精密量取0.50 mL空白纳米乳15份,分3组,置10 mL容量瓶中,分别加入20 μg/mL辣椒碱标准储备液0.40、0.50、1.00 mL,各5份,无水乙醇定容,超声混匀,0.45 μm滤过,精密吸取续滤液20 μL按上述色谱条件测定,外标法计算回收率。结果高、中、低浓度平均回收率分别为100.14%、102.56%、107.25%,RSD值分别为1.  30%、0.83%、0.58%(n=5),见表7。

  2.7.9    含量测定    精密量取0.004%辣椒碱纳米乳0.50 mL,无水乙醇溶解并定容至10 mL,超声混匀,得辣椒碱供试液;另精密称取辣椒碱对照品适量,无水乙醇配成2.0 μg/mL辣椒碱对照液。分别吸取辣椒碱供试液、对照液20 μL,按上述色谱条件测定,外标法计算含量。结果3个批号辣椒碱含量分别为94.50%、94.55%和94.10%。

  表7    辣椒碱纳米乳回收率(略)

  Table 7    Recovery of capsaicin nanoemulsion

  2.8    辣椒碱纳米乳包封率测定
        
  包封率测定方法参照文献[13]:量取0.004%辣椒碱纳米乳0.3 mL滴到葡聚糖凝胶柱中心,2 000 r/min离心5 min,洗脱液用无水乙醇溶解并定容至10 mL,超声混匀,按“2.7.1”项色谱条件测定,将峰面积代入标准曲线计算药物浓度。根据式1-1计算辣椒碱纳米乳的包封率。
     
  包封率=(ρ包封/ρ总药)×100%             (1-1)
     
  式中ρ总药表示辣椒碱总质量浓度,ρ包封表示纳米乳中被包封辣椒碱质量浓度。测得3批辣椒碱纳米乳的包封率分别为85.83%、84.50%、85.34%,RSD为0.79%。见表8。

  表8    辣椒碱纳米乳包封率(略)

  Table 8    Entrapment efficiency of capsaicin nanoemulsion

  3    讨论

  3.1    影响乳滴粒径因素

  3.1.1    油、表面活性剂种类    油、表面活性剂种类是影响乳滴粒径的重要因素。根据纳米乳形成机理,当表面活性剂的亲水亲油平衡值(HLB)与油所需HLB值相当时,形成纳米乳较稳定[14]。当油、表面活性剂浓度不变,分别以大豆油、油酸乙酯、MCT为油相,形成乳滴粒径由小到大排列:吐温80<泊洛沙姆F68<豆磷脂。可见,乳化剂乳化能力由强到弱排列:吐温80>泊洛沙姆F68>豆磷脂。同时,表3结果也表明,乳滴粒径随吐温80增加、豆磷脂减少而逐渐减小,说明吐温80乳化能力较强。制备O/W型乳剂,所需乳化剂的HLB值在8~16范围内,吐温80的HLB值为15.0;而豆磷脂仅3.  0,脂溶性过强,在水相体系中分散性较差,难以在油水两相中很好的分配;相反,泊洛沙姆F68的HLB值为29.0[12]516-519,亲水性强,不能在油水界面大量吸附,也难以形成牢固的界面膜,故乳化能力均较差。
     
  油的种类同样影响微乳的形成。如表1所示,吐温80作乳化剂,油酸乙酯或MCT为油相时均能形成透明微乳,而大豆油不能,这可能与大豆油为长链植物油,较难乳化有关。依据文献[15~18]报道,油相分子的大小以及碳链的长短影响微乳的形成:油相分子体积越小,对药物的溶解能力越强;碳氢链越短的油越能嵌入表面活性剂中形成界面膜,所得微乳相图区域越大。反之,碳氢链过长的油则不易形成微乳。因此,油酸乙酯、MCT较大豆油易乳化。

  3.1.2    表面活性剂用量    当油、表面活性剂种类固定时,表面活性剂用量显著影响乳滴粒径的大小。如表2所示,吐温80∶MCT的质量比由1∶1增大到4∶1时,透光率由0.5%增大到99.6%,可见乳滴粒径随表面活性剂用量增大而减小。文献[19]也说明,纳米乳中乳化剂的用量为油量的20%~30%,而普通乳中乳化剂多低于油量的10%。这是因为纳米乳乳滴小界面积大,表面能高,需要浓度更高的乳化剂才能有效降低表面能,形成纳米乳。但考虑到毒性,在形成纳米乳前提下表面活性剂的用量应尽可能少。

  3. 2    影响包封率因素
     
  除了油的种类影响乳滴粒径以外,油的浓度是影响纳米乳包封率的关键因素。当MCT由0.15 g增大到1.50 g时,包封率由20.07%提高到85.  22%。这是因为当辣椒碱浓度不变时,增大油的量,乳化剂、助乳化剂按比例增加,药质比随之提高,使更多药物溶解在油、乳化剂、助乳化剂组成的均相中,形成均匀透明的溶液;遇水乳化后药物被包裹的比例随之提高。此外,表5、表6说明乳化温度与油、水滴加顺序对辣椒碱纳米乳包封率的影响不大。

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