CT抗原的研究进展

来源:岁月联盟 作者:徐丽湘,吴喆 时间:2010-07-13

【关键词】  CT 抗原 研究进展

1991年,Bruggen等人[1]使用基因转染技术发现了第一个癌/睾丸抗原(cancer testis antigen,CTA)MAGE?1。以后的20多年中,不少学者对CT抗原做了大量的研究。

  CTA是一类具有特异性表达模式的肿瘤相关抗原,其表达具有以下特点[2,3]:①具有共同的表达模式,即在正常组织中仅限于睾丸的生殖细胞如精子、卵子和胎盘的滋养层细胞中表达,而在各种肿瘤组织中有不同频率的表达;②大多数CT抗原位于X染色体上;③通常是以多个家族成员的形式存在;④在各种来源不同的肿瘤组织中,CT抗原的表达常具有异质性。

  目前已发现96个CTA,分别有15个基因家族和31种基因编码。根据CT抗原定位是否在X染色体上,可将CTA基因分为两大类:①X?CTA,定位于X染色体上,包括MAGE、GAGE、NY?ESO?1等;②NonX?CTA,则定位在不同的染色体上,如SCP?1、CT9等。

  1 CTA在生殖细胞中的表达 CTA最初定义为只能限制性表达在正常睾丸和多种肿瘤组织的一类抗原。随着研究的深入,发现有些CTA并不严格限制表达于正常睾丸,在一些正常组织中也有表达。成人的卵巢一般很少有CTA的表达[4~6],但是胎儿时期的卵巢却发现有多种CTA的表达[7]。2007年,Peter等[7]应用了免疫组织化学的方法检测了MAGE?A1、MAGE?A3、MAGE?A4、MAGE?C1、NY?ESO?1等5种CTA在胎儿不同时期卵巢中的表达情况,结果发现5种CTA 在胎儿时期的卵巢中均有表达,其中MAGE?A3、MAGE?A4、MAGE?C1的表达具有时相性,在胚胎的早期13~17周表达由弱逐渐增强,在18周时3种CTA均达到高峰,随后又逐渐减弱, MAGE?A1和NY?ESO?1一直处于低水平表达,而在其他的非性腺组织中未能检测到这5种CTA的表达。CTA主要限制性的表达于男性生殖细胞精子发生的早期[8,9],例如MAGE?A主要表达于精原细胞[10], SCP?1主要表达于精母细胞的减数分裂偶线期[11],而OY?TES?1 编码的蛋白也称为SP32(sperm protein 32)则主要表达在精子发生的晚期[12]。Gjerstorff MF等[13]还对CT抗原MAGE?A1、GAGE和NY?ESO?1在人生殖腺发育过程中的表达进行了研究,发现GAGE在生殖原基的原生殖细胞中有表达,而MAGE?A1和NY?ESO?1则是在生殖腺分化为睾丸和卵巢之后才表达。在妊娠6个月时,3个CT抗原在生殖细胞中的表达达到高峰,此后逐渐下降,在卵母细胞中,MAGE?A1的表达在出生后终止,而NY?ESO?1则持续到新生时期,GAGE可达成年。

  2 CTA基因的表达调控 DNA甲基化是由DNA甲基化转移酶(DNA methyltransferase,DNMT)介导,S?腺苷酸作为甲基供体,将胞嘧啶转变为5?甲基胞嘧啶的一种反应,主要发生在胞嘧啶?鸟嘌呤的CpG二核苷酸种的胞嘧啶碱基上。目前认为DNA 甲基化是基因表达调控的机制之一,主要通过以下三方面影响基因的转录:①DNA 的甲基化改变了DNA 分子的空间构象,从而影响基因表达;②基因启动子区域高甲基化状态直接阻碍转录因子与启动子的结合;③高甲基化的CpG 岛通过特异的甲基化结合蛋白(methyl?CpG?bindingprotein,Mecp)与组蛋白去乙酰化酶(histonedeacetylase,HDAC)协同作用,增强HDAC 去乙酰化的活性,从而导致基因转录失活[14]。目前已有不少实验证明,DNA甲基化在CTA基因的表达调控中起作用。Jang等[15]研究发现癌组织中的AGE?A1、MAGE?A3、MAGE?B2的表达率和启动子低甲基化的百分率均高于癌旁组织。2008年,Sara J等[16]再次证实了DNMT抑制剂DAC(5?aza?2’?deoxycytidine)能使卵巢癌细胞株表达的多种CTA基因,其中包括MAGE?A1、MAGE?A3、MAGE?A4、MAGE?A6等11种CTA表达上调。

  3 CTA的功能 CTA在生殖方面的功能,目前了解的很少。Itoh研究[10]提出MAGE?A1和A4蛋白在精原细胞和初级精母细胞的细胞核及细胞质中表达,表明这些蛋白在精子发生的早期起作用。CAGE?1作为精子细胞和精子顶体的重要组成部分,对精子头部顶体蛋白的包装起重要作用。SCP?1为联会复合体的主要成分,与染色体配对、交换及分离密切相关[17],SSX 基因可能与抑制转录有关等[18]。精子蛋白17(Sp17),它在精子的顶体反应时有高水平的表达,通过卵细胞透明带硫酸碳水化合物的结合来促进受精,Sp17 的N端与环腺苷酸依赖的蛋白激酶Ⅱα调节亚基二聚体相互作用位点和蛋白激酶A锚定蛋白(a kinase anchoring proteins, AKAPs)结合以调节它们的活性,进而影响精子的顶体反应与活力[19]。这说明Sp17在受精过程中扮演着重要角色。CT抗原成员之一OY?TES?1/Sp32具有连接和促进顶体素原成熟形成顶体素的作用,属于顶体素结合蛋白(acrosin binding protein)[20]。Tardif、Janice等[21,22]先后通过实验证实Sp32与获能相关,但是具体机制尚不清楚。

  4 CTA与肿瘤 CT抗原特殊的表达模式使得CT抗原在肿瘤方面。CT抗原SPAG 9(sperm?associated antigen 9)[23]是c?Jun NH2?端激酶?互动蛋白家族新成员之一,在精卵融合和有丝分裂活化激活蛋白信号通路中有着重要作用。最近研究中发现,90%的卵巢癌组织中检测到SPAG 9 mRNA和蛋白。并在卵巢上皮癌病人中检测到SPAG 9特异性抗体,阳性率为67%,而在正常人为阴性。因此SPAG 9具有卵巢上皮癌诊断和免疫特异性靶抗原的潜力。除此之外,有研究表明[24],NY?ESO?1抗原决定簇ESO157?170,能被HLA?DP4限制性CD4﹢T 细胞和HLA?A2 及A24 限制性CD8﹢T细胞识别。Kunle O等[24]对卵巢上皮癌研究时发现,ESO157?170疫苗诱导的CD8和CD4 细胞克隆能够识别NY?ESO?1表达阳性的肿瘤,对T细胞受体分析显示肿瘤识别的CD4﹢T细胞和非肿瘤识别的CD4﹢T细胞克隆的分子结构是截然不同的。这些都表明NY?ESO?1抗原决定簇ESO157?170或NY?ESO?1全长蛋白具有肿瘤免疫治疗靶抗原的可能。CAGE在子宫内膜癌中亦有表达,而在正常子宫内膜中不表达[25],应用Western blot技术证实了癌细胞中表达有此种蛋白,并用重组蛋白CAGE检测子宫内膜癌患者血清中的抗体anti?CAGE IgG,5/45为阳性,而用ELISA技术则12/45阳性。并且在子宫内膜癌中microsatellite instability(MSI)?H的病人, CAGE抗体阳性率更高7/13(53.8%),而non MSI?H 20例均为阴性。这些都表明了CAGE可用于子宫内膜癌的诊断和免疫治疗,尤其是MSI阳性的子宫内膜癌。CT抗原KU?CT?1也类似[26],在胰腺癌、肺癌和子宫内膜癌中均有表达,其中子宫内膜癌最高7/11(64%)在血清中也检测到相应特异性抗体(2/12),而在正常人为阴性。CT抗原与表达模式的特性与肿瘤有着密切的关系,因此,很多学者都致力于筛选CT抗原作为肿瘤的标记,并应用于免疫治疗。

  5 CTA的研究动态 生殖免疫学的研究证明,免疫因素与不育症有一定的关系。用精子特异性抗原主动免疫动物,能有效地降低动物的生育能力,但是过去的动物试验都未能应用免疫避孕获得满意的效果。因此,免疫避孕遭到怀疑。CT抗原的提出和在生殖领域的研究给免疫避孕带来了新的希望。其中Sp17就有很强的免疫原性,90%的输精管切除的男性可产生抗Sp17 抗体,在患者的血清和生殖道中可检测到这种抗体[27]。Lea IA等[27]做了Sp17对小鼠的生殖能力影响的研究,发现随着嵌合肽免疫剂量的增加,小鼠的生殖能力明显下降,妊娠率从72%减少到29%。撤销免疫后6~8周,基本恢复到免疫前的生育能力[28]。

  最近研究报道[29],有些CT抗原如:NRAGE、NY?ESO、MAGE?1和SSX都有在人体骨髓间充质干细胞中表达,表明CT抗原不仅是生殖细胞的特异性抗原,同时也是干细胞的标志物。最近的研究[30]结果都支持CT抗原SSX在干细胞中有重要作用,SSX在核域段被PcG蛋白Bmi?1占据,PcG蛋白Bmi?1是一个干细胞自我更新的调节因子。SSX还与间充质细胞向上皮细胞分化(mesenchymal?to?epithelial transition MET)相关,通过促进基质金属蛋白酶?2的表达和改变钙粘蛋白?E的水平,从而影响细胞的迁移。MET实质是胚胎不同胚层发育分化的过程,这一过程是可逆的。因此SSX的过度表达有可能是上皮细胞向间充质细胞转变的关键所在,并更有助于肿瘤细胞的转移[31]。Thomas John等[32]研究还发现CT抗原与ECSA/DPPA2胚胎肿瘤抗原Embryo?Cancer Antigen存在共表达。这些都表明CT抗原与肿瘤干细胞有着密切的联系,值得我们深入的研究。

  6 结 语 目前对CT抗原的研究都仅限于CT抗原mRNA 和蛋白表达水平的检测,而对CT抗原表达机制及CT抗原对肿瘤细胞生物学行为的作用了解很少。新的RNA 干扰技术为CT抗原进一步的研究提供了新的平台。随着研究的深入,定能揭开CT表达特异的面纱。

【】
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