凋亡抑制蛋白XIAP与肿瘤多药耐药
【摘要】 XIAP(X-linked inhibitor of apoptosis protein)是凋亡抑制蛋白(inhibitors of apoptosis protein,IAP)家族中最有效的内源性凋亡抑制因子,可以通过直接抑制caspases或者参与信号转导途径抑制细胞凋亡。研究发现,XIAP与肿瘤多药耐药有密切关系,并且有可能成为逆转肿瘤多药耐药提高化疗效果的新靶点。
【关键词】 XIAP 细胞凋亡 抗药性 多药
凋亡抑制蛋白(inhibitors of apoptosis protein,IAPs)是细胞内一类重要的凋亡抑制因子,包括XIAP(X-linked inhibitor of apoptosis protein)、Hiap-1、Hiap-2、NAIP、Survivin、apollon和livin等,与其他可抑制上游caspases的蛋白不同,IAPs是惟一的内源性caspases抑制物。在IAP家族中,XIAP是最有效的内源性caspases抑制因子[1],可以直接抑制caspases并参与其他的细胞功能活动,例如调节受体介导的信号转导和蛋白泛素化等,能够通过多种途径调节细胞凋亡。许多研究表明,XIAP与以诱发细胞凋亡为主的肿瘤多药耐药(multi-drug resistance,MDR)密切相关,并且有可能成为提高肿瘤化疗效果的治疗新靶点。
1 XIAP的结构、表达及调节
XIAP又称作MIHA/hILP/BIRC4,基因定位于Xq25。XIAP含有3个BIR(baculovirus IAP repeat)结构域和1个RING锌指结构域。BIR结构域位于XIAP的N末端,是含有3个保守的半胱氨酸和1个保守的组氨酸序列的锌结合结构域,是IAP家族抑制caspases活性、发挥抗凋亡作用必不可少的结构。RING锌指结构域,位于XIAP的C末端,有E3泛素连接酶活性,能催化自身及靶蛋白通过泛素化而降解,是IAP家族分子另一特征性结构域,也是IAP家族抗凋亡重要的结构。
XIAP广泛表达于大多数成年及胚胎组织中,其mRNA全长约9 kb,其中5′和3′非翻译区(untranslated regions,UTRs)分别长为1.5 kb和6 kb,这种长的UTRs有可能干扰有效的翻译。5′UTR的IRES(internal ribosome entry sequence)可以促使mRNAs在不利的应激条件下(如病毒感染、生长因子去除、低氧、γ照射等)被翻译表达[2]。因此,IRES可能是促使XIAP的mRNA有效翻译表达的一个重要机制,能够显著保护细胞,避免凋亡。
XIAP的负性调节蛋白有XAF1(XIAP associated factor 1)和Smac/DIABLO(second mitochondrial activator of caspases/direct IAPbinding protein with low pI)等。XAF1定位于细胞核,过表达的XAF1能促进XIAP从细胞质向核移位,并结合XIAP拮抗其对caspases的抑制,中和XIAP抗凋亡的能力。Smac/DIABLO定位于线粒体,在凋亡信号刺激后释放,并与XIAP的BIR3结合,抑制XIAP与caspases的结合。丝氨酸蛋白酶Omi/HtrA2在收到凋亡信号后也可从线粒体释放入胞质,降解XIAP等IAP家族成员,这可能是Omi/HtrA2激活caspases诱导凋亡的一个机制。
2 XIAP的抗凋亡途径
XIAP在肿瘤中的抗凋亡作用已被大量实验所证实,它对凋亡的拮抗主要是通过以下几种途径来实现。
2.1 通过抑制caspases拮抗凋亡 XIAP分子可以直接结合和抑制启动性的caspase-9和效应性的caspase-3和caspase-7,但是不能抑制caspase-1、caspase-6、caspase-8和caspase-10。这种对caspases选择性是由BIR结构域上保守氨基酸残基和BIR区间连接区linker的特点决定的。BIR1和BIR2间的连接区linker能与caspase-3及caspase-7的活性中心结合,竞争性抑制两者的活性,BIR2区能够稳定XIAP-caspase复合物。XIAP的BIR3可结合caspase-9形成异源二聚体,使之丧失催化活性。
在被诱导发生凋亡的细胞中发现XIAP蛋白被切割为两个片段[3],N端部分含有BIR1-Linker-BIR2结构域,能够拮抗Fas诱导的凋亡,但是这种作用不如完整的XIAP蛋白有效,而C端含BIR3和RING锌指结构的片段没有抗Fas诱导的凋亡的能力,但是可以几乎完全拮抗Bax诱导的凋亡。XIAP的蛋白酶切也许可以更好的调节抑制细胞凋亡的作用范围,以适应各种不同的凋亡刺激。
蛋白降解是细胞发挥正常功能、维持正常的细胞周期、激活转录因子、去除损伤和错误折叠的蛋白的必要环节。被降解的蛋白需与泛素分子耦连,这个过程由泛素激活酶E1、偶联酶E2和泛素连接酶E3等参与。XIAP具有RING锌指结构介导的E3泛素连接酶活性,能催化自身泛素化和其靶分子的泛素化降解过程。因此XIAP还可以特异性靶向caspases,使其被泛素化降解,保护细胞避免凋亡。而RING区的突变可使E3连接酶活性丧失,使XIAP不能发生自体泛素化降解,抑制了细胞凋亡。
2.2 通过参与信号转导途径抑制凋亡 XIAP是一种多功能生物分子,能参与受体介导的信号转导。XIAP的BIR区介导了和BMP(bone morphogenic protein)的作用,并通过RING锌指结构和BMP受体相互作用。这种相互作用能够介导下游信号分子TAB1(属MAPKKK成员)的活化,这是其他IAPs家族蛋白所无法代替的。活化的TAB1可激活TAK1(TGF-β activated kinase 1)信号途径。这表明XIAP可作为一种TAB1-TAK1的接头蛋白。
XIAP还可选择性激活MAPK信号途径另一个激酶JNK1(c-jun N-terminal kinase 1),这种作用依赖BIR结构和BIR间的连接区。XIAP和BMP受体结合后,激活了TAB1-TAK1-JNK1级联反应途径,这可能介导了对caspase-1诱导凋亡的抑制。
当有外界刺激时,XIAP等的表达能诱导NF-κB的活化,保护细胞免受炎症因子TNFα,IL-1β,LPS等介导的细胞凋亡[4]。此外, XIAP与细胞存活激酶途径PI3K(phosphoinositide 3 kinase)/Akt的相互作用也是促使细胞逃避凋亡的机制之一[5]。
3 XIAP与肿瘤多药耐药的关系
肿瘤产生的耐药性是肿瘤术后化疗失败的只要原因之一[6]。肿瘤多药耐药,即一种药物作用于肿瘤使之产生耐药性后,该肿瘤同时对另一些未接触过的、化学结构无关、作用机制完全不同的多种抗肿瘤药物也产生交叉耐药性的现象。大量研究表明诱导细胞凋亡是许多化学结构不同、作用靶点各异的化疗药物杀伤肿瘤细胞的共同通路。XIAP的表达和活性异常可能作用于肿瘤细胞拮抗化疗药物诱导的凋亡,因此,肿瘤细胞通过逃逸凋亡或拮抗凋亡获得生存这一途径,或许对于解释肿瘤MDR更具有普遍意义[7]。
研究发现,过表达高半胱氨酸蛋白61(cysteina rich 61,Cyr61)的乳腺癌MCF-7细胞能拮抗紫杉醇、表柔比星以及beta-lapachone等多种药物诱导的凋亡,其中XIAP的mRNA及蛋白均有明显的增加,而使用XIAP反义寡核苷酸治疗后,XIAP水平下调能够明显逆转该细胞对多种药物诱导凋亡的拮抗[8]。在移行细胞癌细胞中也发现升高的XIAP是发生多药耐药的一个重要因素[9]。Mansouri等[10]、Sasaki等[11]发现XIAP可能是决定卵巢癌的化疗敏感性的关键因素。黑色素瘤是最富侵袭性的皮肤癌,对多种抗癌药物高度耐药,在其中也观察到XIAP的广泛表达[12],研究发现XIAP能够保护黑素瘤细胞避免肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TNF-related apoptosis-inducing ligand,TRAIL)介导的凋亡[13]。对比研究人HL-60细胞系和它的多药耐药变异株HL-60R细胞系,发现HL-60R中XIAP的mRNAs和蛋白显著过表达[14]。Campone等[15]用亚致死剂量的表柔比星持续作用于HL-60细胞,使之发生获得性化学耐药,能同时耐受P-gp和非P-gp作用物介导的凋亡,而这种对凋亡的拮抗证明是源于诱导了细胞内XIAP的表达。这些结果均证明XIAP的表达和活性异常的确对肿瘤细胞的多药耐药的产生有明显影响。
4 通过抑制XIAP逆转肿瘤多药耐药
细胞中过表达的XIAP导致了对凋亡的抑制,这在肿瘤化疗发生多药耐药中起着重要作用,特异性XIAP抑制剂可使肿瘤细胞的凋亡增加,逆转肿瘤对化疗药物的耐药性。从理论上说,可以从不同的生物学水平实现对XIAP表达的抑制。
4.1 在核酸水平抑制XIAP 反义技术、RNA干扰技术等都是通过不同的方式把与XIAP的mRNA互补的DNA或RNA小分子导入恶性肿瘤细胞,以抑制其蛋白翻译,诱导其mRNA分子的降解。
以腺病毒为媒介转导反义XIAP,能够降低XIAP蛋白的水平,增加细胞对化疗药物诱导的凋亡的敏感性[11-14]。但是由于这种方法有感染的风险,在临床上的应用受到限制。相比而言,反义寡核苷酸更安全更易于使用。在对不同细胞系的研究中(膀胱癌、乳腺癌、卵巢癌、非小细胞性肺癌、急性髓细胞性白血病、前列腺癌等),均发现XIAP反义寡核苷酸的使用下调了XIAP的mRNA水平,导致细胞对几种常用化疗药的耐药性明显降低[16-19]。可见反义核酸技术在逆转肿瘤多药耐药的应用中有着很好的前景。
双链RNA在体内被加工成19~23 bp大小的片段,这些片段被称为小片段干扰RNA(siRNA), 并与许多胞内RNA诱导沉默复合物(RISC)蛋白,在siRNA 的指导下,RISC可以识别并降解目的mRNA,高效、特异地阻断体内特定基因表达[20]。研究发现,siRNAs可以阻断XIAP对药物诱导凋亡的抵抗,增加细胞凋亡,在逆转人乳腺癌MCF-7细胞以及人胶质瘤细胞的化疗耐药中起到重要作用[21,22]。因此,siRNAs可能会是逆转多药耐药的有力工具。
另外,5′端的IRES序列能够促使XIAP的mRNA在各种应激如放疗和化疗中有效的翻译表达以拮抗凋亡,这使其也成为一个有吸引力的治疗靶点。
4.2 调节或阻断XIAP蛋白的功能 抑制XIAP蛋白的功能,通常是设计适当的小分子,使其能够特异性连接靶蛋白,抑制其生物学功能。一种途径是在XIAP高表达的肿瘤细胞中使用单克隆抗体,干扰XIAP的抗凋亡作用,从而诱导凋亡。另一种途径是利用XIAP的负性调节因子,如XAF1、Smac以及Omi等,抑制XIAP的表达,诱导凋亡,逆转肿瘤的化疗耐药。研究发现,当用XAF1阻断XIAP的活性时,XIAP的表达下调,显著增强了肿瘤细胞的凋亡,改善了其对化疗药物的低敏感性[23]。Smac也能够拮抗XIAP,降低细胞对化疗药物的耐药性。近来发现的新的XIAP小分子拮抗剂,结构类似于Smac,含有与Smac N末端残基处相同的AVPI序列,能够通过氢键与XIAP的Bir3结构域结合,抑制XIAP表达,诱导细胞凋亡,可能对于由于XIAP过表达而抵抗药物诱导凋亡的癌症有重要作用[24]。但是,应用于临床前,必须对其蛋白水解的稳定性、细胞通透性和药动学等方面做进一步的改进。
当前,一种新途径引起了更多关注,即使用组合化学文库挑选能够作为XIAP拮抗剂的药小分子。有研究发现一种广谱抗肿瘤活性的小分子,能够逆转XIAP介导的对caspase 3的抑制作用,增加肿瘤细胞对化疗的敏感性[25]。
此外,XIAP作为NF-kappaB的激活目的基因之一,能被NF-kappa B的抑制剂I-kappa B所抑制。在hl60的多药耐药变异株HL-60R中,发现抑制NF-kappa B可能是阻断XIAP上调的有效的方法,改善了细胞对药物诱导凋亡的拮抗[14]。而在乳腺癌MCF-7细胞使用DN-Ikappa B阻断NF-kappa B活性也能有效的降低升高的XIAP水平,逆转细胞对多种药物诱导凋亡的不敏感[8]。因此,这也是一个值得尝试的抑制XIAP逆转MDR的方向。
5 结语
XIAP介导的凋亡抑制可能是肿瘤细胞发生MDR的一种机制,同时也提示XIAP基因及其表达产物可能成为逆转肿瘤细胞MDR、提高化疗效果的新靶点。尽管许多化合物具有体外逆转MDR,的作用,但是在临床应用中,未能取得满意结果。多药耐药是目前肿瘤治疗中的一个难题,逆转肿瘤多药耐药,尚需进一步的研究和探索。
【】
[1] Holcik M, Korneluk RG. XIAP, the guardian angel[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2001,2(7): 550-556.
[2] Holcik M, Gibson H, Robert G, et al. XIAP: apoptotic brake and promising therapeutic target[J]. Apoptosis, 2001,6(4): 253-261.
[3] Suzuki Y, Nakabayashi Y, Nakata K, et al. X-linked inhibitor of apoptosis protein(XIAP) inhibits caspase-3 and -7 in distinct modes[J]. J Biol Chem, 2001,276(29):27058-27063.
[4] Hofer-Warbinek R, Schmid JA, Stehlik C, et al. Activation of NF-kappa B by XIAP, the X chromosome-linked inhibitor of apoptosis, in endothelial cells involves TAK1[J]. J Biol Chem, 2000, 275(29):22064-22068.
[5] Zhang J, Li Y, Shen B. PI3-K/Akt pathway contributes to IL-6-dependent growth of 7TD1 cells[J]. Cancer Cell Int, 2003,3(1):1-8.
[6] 赵旭,陈孝平,何松青,等. TRAIL联合表柔比星诱导肝癌耐药株凋亡的实验研究[J].消化外科,2005,4(3):202-207.
[7] Hannun YA. Apoptosis and the dilemma of cancer chemotherapy[J].Blood, 1997, 89(6):1845-1853.
[8] Lin MT, Chang CC, Chen ST, et al. Cyr61 expression confers resistance to apoptosis in breast cancer MCF-7 cells by a mechanism of NF-kappaB-dependent XIAP up-regulation[J]. J Biol Chem, 2004,279(23): 24015-24023.
[9] Bilim V, Kasahara T, Hara N, et al. Role of XIAP in the malignant phenotype of transitional cell cancer (TCC) and therapeutic activity of XIAP antisense oligonucleotides against multidrug-resistant TCC in vitro[J]. Int J Cancer, 2003,103(1): 29-37.
[10] Mansouri A, Zhang Q, Ridgway LD, et al. Cisplatin resistance in an ovarian carcinoma is associated with a defect in programmed cell death control through XIAP regulation[J]. Oncol Res, 2003,13(6-10):399-404.
[11] Sasaki H, Sheng Y, Kotsuji F. Down-regulation of X-linked inhibitor of apoptosis protein induces apoptosis in chemoresistant human ovarian cancer cells[J]. Cancer Res, 2000,60(20):5659-5666.
[12] Soengas MS, Lowe SW. Apoptosis and melanoma chemoresistance[J]. Oncogene, 2003, 22(20): 3138-3151.
[13] Zhang XD, Zhang XY, Gran CP, et al. Tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand-induced apoptosis of human melanoma is regulated by smac/DIABLO release from mitochondria[J]. Cancer Res, 2001, 61(19): 7339-7348.
[14] Notarbartolo M, Cervello M, Poma P, et al. Expression of the IAPs in multidrug resistant tumor cells[J]. Oncol Rep, 2004,11(1):133-136.
[15] Campone M, Vavasseur F, Le-Cabellec MT, et al. Induction of chemoresistance in HL-60 cells concomitantly causes a resistance to apoptosis and the synthesis of P-glycoprotein[J]. Leukemia, 2001,15(9):1377-1387.
[16] Li J, Feng Q, Kim JM, et al. Human ovarian cancer and cisplatin resistance: possible role of inhibitor of apoptosis proteins[J]. Endocrinology, 2001,142(1):122-130.
[17] Hu Y, Cherton-Horvat G, Dragowska V, et al. Antisense oligonucleotides targeting XIAP induce apoptosis and enhance chemotherapeutic activity against human lung cancer cells in vitro and in vivo[J]. Clin Cancer Res, 2003, 9(7):2826-2836.
[18] Carter BZ, Milella M, Tsao T, et al. Regulation and targeting of antiapoptotic XIAP in acute myeloid leukemia[J]. Leukemia, 2003, 17(11):2081-2089.
[19] Amantana A, London CA, Iversen PL, et al. X-linked inhibitor of apoptosis protein inhibition induces apoptosis and enhances chemotherapy sensitivity in human prostate cancer cells[J]. Mol Cancer Ther, 2004,3(6): 699-707.
[20] 高鹏.肿瘤多药耐药及其基因治疗[J].普通外科进展,2005,8(2):72-75.
[21] Lima RT, Martins LM, Guimaraes JE, et al. Specific downregulation of bcl-2 and XIAP by RNAi enhances the effects of chemotherapeutic agents in MCF-7 human breast cancer cells[J]. Cancer Gene Ther, 2004,11(5): 309-316.
[22] Hatano M, Mizuno M, Yoshida J. Enhancement of C2-ceramide antitumor activity by small interfering RNA on X chromosome-linked inhibitor of apoptosis protein in resistant human glioma cells[J]. J Neurosurg, 2004,101(1):119-127.
[23] Yang L, Cao Z, Yan H, et al. Coexistence of high levels of apoptotic signaling and inhibitor of apoptosis proteins in human tumor cells: implication for cancer specific therapy[J]. Cancer Res, 2003 ,63(20):6815-6824.
[24] Cheol-Min P, Chaohong S, b Edward T, et al. Non-peptidic small molecule inhibitors of XIAP[J]. Bioorg Med Chem Lett, 2005,15(3): 771-775.
[25] Schimmer AD, Welsh K, Pinilla C, et al. Small-molecule antagonists of apoptosis suppressor XIAP exhibit broad antitumor activity[J]. Cancer Cell, 2004,5(1):25-35.